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細胞凍存及復蘇的基本原則是“慢凍快融”，這樣可以較大限度的保存細胞活力。目前細胞凍存多用二甲基亞砜（DMSO）作為保護劑，這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性；緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外，減少細胞內冰晶的形成，從而減少冰晶對細胞的物理損傷。復蘇細胞采用快速融化的方法可以保證細胞外結晶在很短的時間內融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。血清完全細胞凍存液，通用于各種動物細胞株。特別配方有效提高細胞存活率和活力。不含動物來源性蛋白，能減少各類病毒、霉菌和支原體等污染，確保凍存細胞安全。適合用于無血清培養細胞和蛋白表達細胞。細胞存儲中對細胞凍存更有特殊要求。正規無血清細胞凍存液廠家批發價

無血清細胞凍存液：凍存注意：開蓋之前，用70%的乙醇或異丙醇擦拭瓶身。以下說明適用于在6孔板內的培養物的凍存。培養物應該在適合傳代的時候進行收集和凍存。每管所含有的細胞應當來源于6孔板的1個培養孔。如果使用其他的培養器皿，請相應的調整體積。1.在室溫（15-25°C）以300xg離心5分鐘。2.輕輕吸走上清液，注意不要擾動細胞團。3.用血清學吸管以1mL的TBD-698重懸細胞。在打散細胞團時，盡量減少細胞聚集體分解。4.用2mL的血清學吸管將1mL的細胞聚集體轉移到標記好的凍存管中。5.用以下方法凍存細胞聚集體:推薦使用緩速降溫方法，每分鐘降低1度，隨后可以在-196°C液氮長期保存。不推薦在-80°C長期保存。逐步降溫法：-20°C保存2個小時，然后-80°C中保存2個小時，隨后可以在-196°C液氮中長期保存。寧波無血清細胞凍存液生產廠家待凍存管中細胞混合液完全融化后，立即加入1 ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合。

細胞凍存配制含10%DMSO或甘油的細胞凍存液，4℃預冷（新鮮配制的凍存液會產生大量的熱）；取對數生長期的細胞，用細胞消化酶將單層生長的細胞消化下來；懸浮細胞則直接將細胞收集到離心管中；離心1200rpm，6min；去除上清液，逐漸加入適量預冷的細胞凍存液，用吸管輕輕吹打使細胞均勻，計數，調節凍存液中的細胞終濃度為5×10e6/ml~1×10e7/ml；將細胞分裝入凍存管中，每管1~1.5ml；在凍存管上標明細胞的名稱、凍存時間及操作人員姓名；凍存：標準的凍存程序為降溫速率-1~-2℃/min；到達-80℃時，則可迅速放入液氮中。

無血清細胞凍存液產品用途：1.無血清細胞凍存液可用于造血干細胞、間充質干細胞等干細胞的儲存。2.無血清細胞凍存液可用于T淋巴細胞、NK細胞等免疫細胞的存儲。3.無血清細胞凍存液可用于其他類型哺乳動物細胞的儲存。無血清細胞凍存液產品原理：無血清細胞凍存液，含多種保護劑成分。一些保護劑，易于穿透細胞，避免細胞內部水分子形成冰晶損傷細胞，同時另一些保護劑不能穿透細胞，但可以在冰晶形成之前，優先結合細胞外的水分子，降低細胞外溶液的電解質濃度，減少陽離子進入細胞的數量，無血清細胞凍存液，為多種保護劑組合，在細胞內外進行雙重保護，較大提高了細胞復蘇存活率。無血清細胞凍存液使用方法：按照常用方法收集懸浮細胞或貼壁細胞于試管中。

無血清細胞凍存：在細胞培養中，細胞凍存是較關鍵環節之一，尤其在細胞治好、細胞存儲中對細胞凍存更有特殊要求，下面就根據降溫速度以及凍存液組分對細胞凍存做詳細介紹。根據降溫速度區分，細胞凍存可以分為程序降溫凍存與非程序降溫凍存。根據凍存方式不同可以分為慢速凍存（程序降溫法）與快速凍存（非程序降溫法）。程序降溫凍存技術要點是慢凍，標準的凍存程序為降溫速率-1～-2/℃min；當溫度達-25℃以下時，可增至-5℃～-10℃/min。之前，常用的傳統方法是將凍存管置于4℃30分鐘--20℃60分鐘--80℃過夜-液氮罐。不過，由于步驟較多，間隔時間又長，很容易遺忘。之后，人們也開始使用程序降溫盒。將凍存管放入程序降溫盒中，再將程序降溫盒放入-80℃冰箱。以1℃/min的速度進行降溫。存細胞時需現配凍存液(如購買市面上通用的含血清細胞凍存液。青島無血清細胞凍存液供應商

凍存要求發生改變，因為凍存細胞要進行臨床應用。正規無血清細胞凍存液廠家批發價

無血清細胞凍存液的操作規范：1、培養細胞至對數生長晚期，顯微鏡觀察其外觀、形態、有無污染等。選擇狀態良好的細胞進行凍存操作(注：貼壁生長細胞，用胰蛋白酶消化并用完全培養基終止消化，進行細胞計數;懸浮生長細胞，進行細胞計數)。2、500～1000g離心5min，棄上清。3、加入適量的細胞凍存液，重懸細胞，使細胞濃度達到1～10×106/ml，置于凍存管中密閉。4、采取逐級降溫保存：4℃放置20min，-20℃放置30min，-70℃過夜，置于液氮罐中長期存儲。注意：務必超凈工作臺內無菌操作，避免污染。雜交瘤細胞凍存時應定期復蘇，以檢查細胞的活性和分泌抗體的穩定性。正規無血清細胞凍存液廠家批發價