1983年,外泌體初次于綿羊網織紅細胞中被發現,1987年Johnstone將其命名為“exosome”。多種細胞在正常及病理狀態下均可分泌外泌體。其主要來源于細胞內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體,經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。所有培養的細胞類型均可分泌外泌體,且外泌體天然存在于體液中,包括血液、唾液、尿液、腦脊液和乳汁中。有關他們分泌和攝取及其組成、“運載物”和相應功能的精確分子機制剛剛開始研究。外泌體目前被視為特異性分泌的膜泡,參與細胞間通訊,對外泌體的研究興趣日益增長,無論是研究其功能還是了解如何將其用于微創診斷的開發。如何高效地提取外泌體是實現這項新興液體活檢技術臨床常規化應用的關鍵外泌體提取:基于聚合物的沉淀技術。武漢外泌體提取試劑供應商
外泌體相關蛋白質與肺病的診斷:近年來,高通量質譜分析被普遍地應用于篩選NSCLC外泌體蛋白的研究,這為我們揭示了更多具有生物標志物價值的分子。Birgitte等采用微陣列芯片技術研究了431例肺病患者和150例對照者血漿外泌體中的蛋白表達情況,發現CD151、CD171和TSPAN8這三種蛋白表達不光能區分一些病癥與正常組織,同時也能區分各種肺病的組織亞型。此外,聯合應用這三種蛋白診斷NSCLC的AUC達到0.74。Clark等采用納升液聯用技術(nano-ESI-LC-MS/MS)分析了來自正常支氣管上皮細胞系和兩個攜帶NSCLC細胞系的外泌體的蛋白表達譜,從中篩選出如細胞外基質金屬蛋白酶誘導因子、溶酶體膜糖蛋白2等多種存在顯著性差異表達的蛋白,同時檢測分析這些蛋白有助于提高NSCLC診斷的敏感性和特異性。由于國內有關外泌體提取試劑的缺乏,我國對外泌體的研究還基本依賴于過程繁瑣的超速離心和進口提取試劑盒。蕪湖正規外泌體提取試劑超離法是較常用的外泌體純化手段,采用低速離心、高速離心交替進行,可分離到大小相近的囊泡顆粒。
外泌體的提取方法,先用含無外泌體血清的培養基對人脂肪來源間充質干細胞進行饑餓培養,這樣可使干細胞處于正常生長狀態,不會被克制生長增殖,其所分泌的外泌體所包含的有效物質也更貼近其自然狀態下的外泌體,然后將含有外泌體的培養上清液進行低速差速離心(即先一離心處理、再第二離心處理)以去除細胞及其碎片,用100kd超濾管對低速差速離心后的離心液進行超濾濃縮得到外泌體濃度更高的超濾液,將超濾液經過第三離心處理去除雜質后直接用0.22μm過濾器過濾除菌,過濾掉粒徑為220nm以上的物質,進一步得到含顆粒粒徑小于220nm的濃縮液,因超濾濃縮處理和第三離心處理使得液體量濃縮,這樣過濾除菌效率得到較大提高,較后將濃縮液進行超速離心的第四離心處理分離提取到外泌體。該外泌體的提取方法,既結合了差速離心,又結合了超濾和超速離心,通過該提取流程,較終可高效地從人脂肪來源間充質干細培養上清液中提取到高濃度、高純度的外泌體,具有操作簡單、成本低,適合產業化生產的特點。
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外泌體的提取主要包括以下幾種方式。一是超速離心法,這是目前外泌體提取較常用的方法。此種方法得到的外泌體量多,但是純度不足,電鏡鑒定時發現外泌體聚集成塊,由于微泡和外泌體沒有非常統一的鑒定標準,也有一些研究認為此種方法得到的是微泡不是外泌體。二是過濾離心,這種操作簡單、省時,不影響外泌體的生物活性,但同樣存在純度不足的問題。三是密度梯度離心法,用此種方法分離到的外泌體純度高,但是前期準備工作繁雜,耗時,量少。外泌體檢測作為一種新型的液體活檢熱點技術已被許多臨床科研機構普遍地應用于一些病癥和疾病的無創診斷。逐漸取代超速離心法并推廣開來。有些試劑盒操作簡便,不用超速離心。上海外泌體提取試劑廠家批發價
有的是通過特殊設計的過濾器過濾掉雜質成分,有的則采用空間排阻色譜法(SEC)進行分離純化。武漢外泌體提取試劑供應商
外泌體作為近幾年來的研究熱點,受到了科研工作者的青睞及追捧。由于外泌體內攜帶有大量的miRNA,少量lncRNA,Mrna以及DNA蛋白質成為液體活檢的潛力無限的研究對相。所以,獲得純度高、內容物完整的外泌體非常之重要,那么,外泌體的提取方法也顯得尤為重要。一、差速離心法差速離心法可以說是傳統普遍的外泌體提取方法。原理是:首先低速離心以除去細胞和細胞凋亡碎片;隨后,高速離心以去除大囊泡;高速離心以沉淀外泌體。蘇州君欣生物科技有限公司武漢外泌體提取試劑供應商