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糖原染色試劑盒。含乙二醇基的多糖經過碘酸氧化，產生醛基，與雪夫（Schiff）試劑中無色品紅結合，形成紫紅色沉淀物定位于含糖原的胞漿中。該反應稱為碘酸-雪夫（PAS）反應。（1）雪夫液配制：堿性品紅1g溶于200ml沸水中，冷卻60℃時過濾，加1mmol/L鹽酸20ml，再冷卻至25℃左右，加偏重亞硫酸鈉（Na2S2O5）2g，混合后放棕色瓶中，置暗處24h，無色即可放冰箱中保存，呈微紅色，則加活性炭1～2g，吸附過濾使成無色液體，放冰箱中保存。若溶液變紅，即不能再用。（2）10g/L過碘酸水溶液：過碘酸（HIO4·2H2O）1g,加蒸餾水至10ml。溶解后蓋緊放冰箱備用，一般可用3個月，變黃則失效。對鹽基性染料有親合力，因此在HE染色中、切片上的粘液呈污穢藍色。天津咨詢糖原染色試劑盒銷售廠家

PAS技術是很少可檢測不同種類的黏液物質(如糖原、黏蛋白和糖蛋白)的方法，但PAS技術卻不能區別黏蛋白和糖原。若要冸確鑒別黏液物質(如黏蛋白或糖原)，需加入糖原消化步驟。大多數情冴下可用α–淀粉酶或麥芽淀粉酶來催化糖原的糖苷鍵水解，形成水溶性的雙糖-麥芽糖，在應用PAS技術之前將糖原從組織切片上除去。人類的唾液被認為是消化糖原的一種有效手段，但是出于安全以及缺乏標冸唾液的考慮，不主張應用唾液。所以網狀纖維的組織化學染色，在臨床病理診斷上占著相當重要的位置。江西口碑好的糖原染色試劑盒過碘酸氧化時間不宜過久，氧化時的溫度以18～22℃佳。

糖原及粘液染色法注意事項：1、糖原的固定要及時，而且標本要新鮮。2、如用無水酒精作糖原的固定劑，有它的弊病，因無水酒精滲透較慢，而且容易產生極化，（極化是糖原顆粒趨向于細胞的一端）。故用Gendre氏固定液效果較佳，其配法如下：苦味酸飽和于95%酒精85ml40%甲醛10ml冰醋酸5ml3、各種試劑必須化學純，亞硫酸鈉須有濃厚氣味，器皿必須潔凈而干燥，染色缸亦是。4、如果Schiff氏試劑，在經過活性碳吸附漂白后不顯無色，首先應考慮試劑中的偏重亞硫酸鈉是否失效。如果偏重亞硫酸鈉氣味不濃，使用時可考慮適當的增加用量。其次考慮堿性品紅本身，常常雖屬同一生產廠家，但不同批號，其效果就可能不同，應特別引起注意。

糖原染色在使用過程中需要注意以下幾個方面：盡可能選取小塊新鮮組織及時固定。糖原易溶于水，在酶的作用下很容易分解葡萄糖，更易溶于水，固定之前決不能用水或生理鹽水等浸洗。應避免用水溶性固定液，宜采用酒精性固定液，如Carnoy液，能較好地保存糖原，但有使糖原流動到細胞一側的現象，多數人認為是由于固定劑把細胞內的糖原推向固定劑對組織浸透的方向而造成。其他組織應用中性福爾馬林固定為佳。組織在4℃左右溫度內固定與保存，是針對糖的性質和避免糖原溶于水而采取的相應措施。乙醇能沉淀白蛋白、球蛋白，亦能**白和糖原沉淀，但仍可溶于水，因此較好不單獨使用乙醇固定，以乙醇為溶劑的混合固定液固定為佳0.5%過碘酸水溶液5分鐘?；?%過碘酸95%酒精溶液。

糖原染色法：染色原理細胞胞漿中存在糖原或多糖類物質（如糖蛋白、粘多糖、糖脂、粘蛋白等），過碘酸能使細胞內的多糖乙二醇基氧化為二醛基，其與Schiff試劑中的無色品紅結合后呈現紫紅色，沉積在細胞內多糖所在之處。染色步驟：1.組織石蠟包埋切片后脫蠟至水，蒸餾水洗2min（細胞爬片4%多聚甲醛固定后水洗）；2.滴加過碘酸溶液，氧化5min；3.蒸餾水洗10min；4.滴加Schiff試劑，侵染10-20min；5.傾去Schiff試劑，流水沖洗10min；6.滴加蘇木素染色液，染核1-2min；7.流水沖洗5min；8.酸性乙醇分化液分化保存冰箱備用。溶液如顯淺紅色或草黃色，染色效果較差。江西如何使用糖原染色試劑盒報價

在染色過程中較好不要在玻片上貼標簽紙。天津咨詢糖原染色試劑盒銷售廠家

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