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PCR設計引物應遵循以下原則：①引物長度：15-30bp，常用為20bp左右。②引物擴增跨度：以200-500bp為宜，特定條件下可擴增長至10kb的片段。③引物堿基：G+C含量以40-60%為宜，G+C太少擴增效果不佳，G+C過多易出現非特異條帶。ATGC比較好隨機分布，避免5個以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列。④避免引物內部出現二級結構，避免兩條引物間互補，特別是3'端的互補，否則會形成引物二聚體，產生非特異的擴增條帶。⑤引物3'端的堿基，特別是較末及倒數第二個堿基，應嚴格要求配對，以避免因末端堿基不配對而導致PCR失敗。⑥引物中有或能加上合適的酶切位點，被擴增的靶序列比較好有適宜的酶切位點，這對酶切分析或分子克隆很有好處。⑦引物的特異性：引物應與核酸序列數據庫的其它序列無明顯同源性。引物量：每條引物的濃度0.1～1umol或10～100pmol，以比較低引物量產生所需要的結果為好，引物濃度偏高會引起錯配和非特異性擴增，且可增加引物之間形成二聚體的機會。英瀚斯生物pcr檢測，保證真實實驗檢測，數據保密完整性。山東熒光定量pcr公司

PCR實驗室設計的中心問題是如何避免污染。在實際工作中，常見的有以下幾種污染類型：擴增產物的污染；天然基因組DNA的污染；試劑的污染以及標本間的污染。由于一旦發生污染，實驗就必須停止，直到找到污染源為止，而且實驗結果必須作廢，需重新進行實驗。所以發生污染后再圍繞實驗室來尋找污染源不但耗時而且繁瑣，浪費人力物力。因此要避免污染，首先應是預防，而不是排除。PCR擴增檢驗實驗室原則上分為四個單獨的工作區域：試劑貯存和準備區、標本制備區、擴增反應混合物配制和擴增區、擴增產物分析區。為避免交叉污染，進入各個工作區域必須嚴格遵循單一方向進行，即只能從試劑貯存和準備區→標本制備區→擴增反應混合物配制和擴增區→擴增產物分析區。 各實驗區之間的試劑及樣品傳遞應通過傳遞窗進行。甘肅什么是pcr怎么選擇英瀚斯生物可承接臨床樣本、動物組織、細胞樣本各類pcr檢測。

PCR由變性--退火--延伸三個基本反應步驟構成：

1、模板DNA的變性：模板DNA經加熱至93℃左右一定時間后，使模板DNA雙鏈或經PCR擴增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應作準備。

2、模板DNA與引物的退火（復性）：模板DNA經加熱變性成單鏈后，溫度降至55℃左右，引物與模板DNA單鏈的互補序列配對結合。3、引物的延伸：DNA模板--引物結合物在72℃、DNA聚合酶（如TaqDNA聚合酶）的作用下，以dNTP為反應原料，靶序列為模板，按堿基互補配對與半保留復制原理，合成一條新的與模板DNA鏈互補的半保留復制鏈。重復循環變性--退火--延伸三過程就可獲得更多的“半保留復制鏈”，而且這種新鏈又可成為下次循環的模板。每完成一個循環需2～4分鐘，2～3小時就能將待擴目的基因擴增放大幾百萬倍

PCR實驗過程一般分為三步：DNA變性：（90℃-96℃）：雙鏈DNA模板在熱作用下，氫鍵斷裂，形成單鏈DNA退火：（60℃-65℃）：系統溫度降低，引物與DNA模板結合，形成局部雙鏈。延伸：（70℃-75℃）：在Taq酶（在72℃左右，活性比較好）的作用下，以dNTP為原料，從引物的3′端開始以從5′→3′端的方向延伸，合成與模板互補的DNA鏈。每一循環經過變性、退火和延伸，DNA含量即增加一倍。如圖所示：現在有些PCR因為擴增區很短，即使Taq酶活性不是比較好也能在很短的時間內復制完成，因此可以改為兩步法，即退火和延伸同時在60℃-65℃間進行，以減少一次升降溫過程，提高了反應速度pcr實驗失敗的原因有哪些？

PCR是一種具有選擇性的體外擴增DNA的片段的方法。其特異性由兩個人工合成的引物DNA序列決定。所謂引物是指與待擴增核酸片段兩端互補的寡核苷酸，其本質是ssDNA(單鏈DNA)的片段。指在引物指導下由酶催化的對特定模板（克隆或基因組DNA）的擴增反應，是模擬體內DNA復制過程，在體外特異性擴增基因片段的一種技術，在分子生物學中有普遍的應用，包括用于DNA作圖、DNA測序、分子系統遺傳學等。CR技術的基本原理類似于DNA的天然復制過程，其特異性依賴于與靶序列兩端互補的寡核苷酸引物。DNA的半保留復制是生物進化和傳代的重要途徑。雙鏈DNA在多種酶的作用下可以變性解旋成單鏈，在DNA聚合酶的參與下，根據堿基互補配對原則復制成同樣的兩分子拷貝。在實驗中發現，DNA在高溫時也可以發生變性解鏈，當溫度降低后又可以復性成為雙鏈。因此，通過溫度變化控制DNA的變性和復性，加入設計引物，DNA聚合酶、dNTP就可以完成特定基因的體外復制。簡述熒光定量pcr的基本原理。推薦pcr要多久

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PCR實驗技術中的RT-PCR介紹：在RT-PCR中，通過逆轉錄（RT）將RNA轉化為cDNA，然后通過聚合酶鏈式反應（PCR）擴增cDNA（圖1）。利用cDNA擴增步驟，有望對初始RNA進行進一步研究，即便RNA樣本數量有限或低豐度表達。RT-PCR的常見應用包括表達基因檢測、轉錄物變異檢測，以及克隆和測序用cDNA模板制備。由于逆轉錄可為PCR擴增和下游實驗提供cDNA模板，因此，它是實驗成功的關鍵步驟之一。選定的逆轉錄酶應對所有樣本均具有**高效率，即便是難轉錄RNA樣本，如降解、抑制劑殘留或具有高度二級結構的RNA樣本。一步法和兩步法是兩種**常用的RT-PCR方法，每種方法都具有各自的優缺點。RNA的多聚酶反應（RT-PCR）是以RNA為模板，聯合逆轉錄反應（reversetranscription，RT）與PCR，可用于檢測單個細胞或少數細胞中少于10個拷貝的RNA模板。山東熒光定量pcr公司

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